GERMINACIÓN DE SEMILLAS DE ORQUÍDEAS Y ESPECIES ARBÓREAS MEDIANTE ESCARIFICACIÓN
DOI:
https://doi.org/10.69823/avacient.v3n1a9Palabras clave:
Dormancia, Escarificación, arbóreas, Orquídeas, GerminaciónResumen
La germinación de semillas es un proceso vital de las plantas, pero enfrenta obstáculos como la dormancia y la presencia de sustancias inhibidoras. La escarificación, a través de tratamientos específicos, busca mejorar el porcentaje de germinación. El presente trabajo resume investigaciones recientes sobre diferentes sustancias y técnicas utilizadas en la escarificación de semillas, así como su desarrollo, centrándose en algunas orquídeas y especies arbóreas. En árboles, el uso de medios mecánicos y ácidos para superar la dormancia física acelera la germinación y mejora la propagación. Esto es esencial para la restauración de ecosistemas degradados y la conservación de la biodiversidad. Las condiciones de cultivo, sustratos y factores ambientales como la luz y la temperatura son cruciales en el desarrollo de plántulas. Por otro lado, las orquídeas (Orchidaceae), a pesar de presentar dormancia fisiológica, requieren concentraciones menores de sustancias, como agua desionizada y sacarosa, en lugar de ácidos. Este contraste resalta la diversidad de estrategias adaptativas. Además, las sustancias utilizadas varían según la especie. Aunque la escarificación ha demostrado eficacia, se necesita más investigación sobre el crecimiento a largo plazo y la variabilidad genética. La micropropagación puede ser beneficiosa para una propagación eficiente de plántulas.
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Arceo-Gómez, T. M., Robles-Díaz, E., Manrique-Ortega, M., Martínez-Campos, Á. R., Aragón-Gastélum, J. L., Aguirre-Crespo, F., Ramírez-Albores, J. E., Pérez-Suárez, M., Robles, R., Reyes-Trujeque, J., Can-Estrada, A. A., Gutiérrez-Alcántara, E. J., Sánchez-Soto, B. H., y Zamora-Crescencio, P. (2022). Pre-Germinative treatments and morphophysiological traits in Enterolobium cyclocarpum and Piscidia piscipula (Fabaceae) from the Yucatan peninsula, Mexico. Plants, 11(21), 1-14. https://doi.org/10.3390/plants11212844
Armarego-Marriott, T., Sandoval-Ibáñez, O., y Kowalewska, Ł. (2019). Beyond the Darkness: Recent lessons from etiolation and de-etiolation studies. Journal of Experimental Botany, 71(4), 1215-1225. https://doi.org/10.1093/jxb/erz496
Burrows G. E., Alden R., y Robinson W. A. (2019). Markedly different patterns of imbibition in seeds of 48 Acacia species. Seed Science Research, 29(4), 270-282. https://doi.org/10.1017/S0960258519000242
Castillo, B. B. D., Valdivia, N. A. G. ́ ., y Hernández, J. I. C. (2020). Emergencia y crecimiento de plántulas de piscidia piscipula (L.) sarg. en condiciones de vivero. Acta Universitaria, 30, 1-9. https://doi.org/10.15174/au.2020.2595
Cevallos, S., Sánchez-Rodríguez, A., Decock, C., Declerck, S., y Suárez, J. P. (2016). Are there keystone mycorrhizal fungi associated to tropical epiphytic orchids? Mycorrhiza, 27(3), 225-232. https://doi.org/10.1007/s00572-016- 0746-8
Deconninck, G., y Gerakis, A. (2021). Influence of scarification method on seed germination of the terrestrial orchid Anacamptis laxiflora (Lam.). The eurobiotech journal, 5(1), 15-23. https://doi.org/10.2478/ebtj-2021-0004
Deltalab, B., Naziri Moghadam, N., Khorrami Raad, M., y Kaviani, B. (2023). The effect of cold and acid scarification on seed germination of three green space tree species, Journal of Ornamental Plant, 13(2), 85-97. https://dorl.net/dor/20.1001.1.28210093.2023.13.2.2.5
Dessì, L., Podda, L., Brundu, G., Lozano, V., Carrouée, A., Marchante, E., Marchante, H., Petit, Y., Porceddu, M., y Bacchetta, G. (2021). Seed germination ecophysiology of Acacia dealbata link and Acacia mearnsii de Wild.: two invasive species in the Mediterranean Basin. Sustainability, 13(21), 1-15. https://doi.org/10.3390/su132111588
Hernández‐González, O., Romo-Campos, R. L., Muñiz-Castro, M. A., y Flores, J. (2020). Light and irrigation effects on chlorophyll fluorescence depend on seedling provenance in Magnolia pugana endemic of Mexico. Flora, 271, 151684. https://doi.org/10.1016/j.flora.2020.151684
Jaganathan, G. K. (2018). Physical dormancy alleviation and soil seed bank establishment in Cassia Roxburghii is determined by soil microsite characteristics. Flora, 244-245, 19-23. https://doi.org/10.1016/j.flora.2018.06.004
Jönsson M. T., y Thor, G. (2012). Estimating Coextinction risks from epidemic tree death: Affiliate lichen communities among diseased host tree populations of Fraxinus excelsior. PLOS ONE, 7(9), 1-10. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0045701
Kang, H., Kang, K., Kim, D. H., y Sivanesan, I. (2020). In vitro propagation of Gastrochilus matsuran (Makino) Schltr., an endangered epiphytic orchid. Plants, 9(4), 524. https://doi.org/10.3390/plants9040524
Katsalirou, E., Gerakis, A., y Haldas, X. (2019). Optimal scarification times for seeds of two Mediterranean orchids. European Journal of Environmental Sciences, 9(1), 47-52. https://doi.org/10.14712/23361964.2019.6
Kuswantoro, F., y Li’aini, A. S. (2022). Mechanical scarification influence on Gleditsia assamica BOR water uptake and germination. Biosaintifika: Journal of Biology & Biology Education, 14(2), 160-167. https://doi.org/10.15294/biosaintifika.v14i2.36348
Luera, P., Wahl-Villarreal, K., Christoffersen, B. O., Treviño, A., Soti, P., y Gabler, C. A. (2021). Effects of scarification, phytohormones, soil type, and warming on the germination and/or seedling performance of three Tamaulipan thornscrub forest species. Plants, 10(8), 1-40. https://doi.org/10.3390/plants10081489
Miranda, R. Q., Oliveira, M. T. P., Correia, R. M., Almeida-Cortez, J. S., y Pompelli, M. F. (2011). Germination of prosopis juliflora (SW) DC seeds after scarification treatments. Plant Species Biology, 26(2), 186-192. https://doi.org/10.1111/j.1442-1984.2011.00324.x
Nawrot-Chorabik, K., Pluciński, B., y Latowski, D. (2023). Indirect auxiliary organogenesis of Fraxinus excelsior L. as a tool for ash dieback control. New Forests. https://doi.org/10.1007/s11056-023-09981-x
Nicolás, C., Nicolás, G., y Rodrı́guez, D. (1996). Antagonistic effects of abscisic acid and gibberellic acid on the breaking of dormancy of Fagus sylvatica seeds. Physiologia Plantarum, 96(2), 244-250. https://doi.org/10.1111/j.1399-3054.1996.tb00209.x
Nourmohammadi, K., Kartoolinejad, D., Naghdi, R., y Baskin, C. C. (2019). Effects of dormancy-breaking methods on germination of the water-impermeable seeds of Gleditsia caspica (Fabaceae) and seedling growth. Folia Oecologica, 46(2), 115-126. https://doi.org/10.2478/foecol-2019-0014
Novotná, A., Benítez, Á., Herrera, P., Cruz, D., Filipczyková, E., y Suárez, J. P. (2018). High diversity of root- associated fungi isolated from three epiphytic orchids in southern Ecuador. Mycoscience, 59(1), 24-32. https://doi.org/10.1016/j.myc.2017.07.007
Pansarin, E. R. (2021). Unravelling the enigma of seed dispersal in Vanilla. Plant Biology, 23(6), 974-980. https://doi.org/10.1111/plb.13331
Pierce, S., Spada, A., Caporali, E., Ceriani, R., y Buffa, G. (2018). Enzymatic scarification of Anacamptis morio (Orchidaceae) seed facilitates lignin degradation, water uptake and germination. Plant Biology, 21(3), 409-414. https://doi.org/10.1111/plb.12694
Priyadharshini, R., y Lekha, K. (2021). Effect of scarification methods on different forest seeds. International Journal of Environment, Agriculture and Biotechnology, 6(3), 226-234. https://doi.org/10.22161/ijeab.63.24
Quijia-Lamiña, P. H., Baquero, L. E., Kane, M. E., y Zettler, L. W. (2023). In vitro seed germination and seedling development of Dracula Felix (Luer) Luer—An orchid native to Ecuador. Diversity, 15(6), 732. https://doi.org/10.3390/d15060732
Ramos-Castellá, A. L., Iglesias‐Andreu, L. G., Bello-Bello, J. J., y Lee-Espinosa, H. E. (2014). Improved propagation of vanilla (Vanilla planifolia jacks. ex andrews) using a temporary immersion system. In Vitro Cellular & Developmental Biology – Plant, 50(5), 576-581. https://doi.org/10.1007/s11627-014-9602-8
Rasmussen, H. N. (1992). Seed dormancy patterns in Epipactis palustris (Orchidaceae): Requirements for germination and establishment of mycorrhiza. Physiologia Plantarum, 86(1), 161–167. https://doi.org/10.1111/j.1399- 3054.1992.tb01325.x
Rehman, S. U., y Park, I. (2000). Effect of scarification, GA and chilling on the germination of goldenrain-tree (Koelreuteria paniculata laxm.) seeds. Scientia Horticulturae, 85(4), 319-324. https://doi.org/10.1016/s0304- 4238(00)00126-6
Salazar Mercado, S. A., Quintero Caleño, J. D., y Moreno Rozo, L. Y. (2020). Improvement of the methodology of the tetrazolium test using different pretreatments in seeds of the genus Epidendrum (Orchidaceae). Journal of Seed Science, 42, 1-8. https://doi.org/10.1590/2317-1545v42231028
Salazar, A., y Ramírez, C. (2019). Effects of mechanical and acid scarification on germination performance of Schizolobium parahyba (Fabaceae - Caesalpinioideae) seeds. Journal of Tropical Biology & Conservation (JTBC), 16, 213-227. https://doi.org/10.51200/jtbc.v16i0.2040
Samuel, K., Debashish, D., Madhumita, B., Padmaja, G., Prasad, S. R., Ramana Murthy, V. B., y Rao, P. S. (2009). In vitro germination and micropropagation of Givotia rottleriformis Griff. In Vitro Cellular & Developmental Biology - Plant, 45(4), 466–473. https://doi.org/10.1007/s11627-008-9181-7
Santillán-Fernández, A., Zúñiga, A. S., y Bautista, N. V. (2018). La productividad de la vainilla (Vanilla planifolia Jacks. ex Andrews) en México de 2003 a 2014. Revista Mexicana de Ciencias Forestales, 9(47), 050-069. https://doi.org/10.29298/rmcf.v9i47.165
Šoch, J., Šonka, J., y Ponert, J. (2023). Acid scarification as a potent treatment for an in vitro germination of mature endozoochorous Vanilla planifolia seeds. Botanical Studies, 64(1), 1-10. https://doi.org/10.1186/s40529-023- 00374-z
Sugiyama, A., Friday, J. B., Giardina, C. P., y Jacobs, D. F. (2021). Intraspecific variation along an elevational gradient alters seed scarification responses in the polymorphic tree species Acacia koa. Frontiers in Plant Science, 12. https://doi.org/10.3389/fpls.2021.716678
Yeh, C. H., Chen, K., y Lee, Y. I. (2021). Asymbiotic germination of Vanilla planifolia in relation to the timing of seed collection and seed pretreatments. Botanical Studies, 62(1), 1-12. https://doi.org/10.1186/s40529-021-00311- y
Zale, P. J., Clayton, A., Nix, J., y Taylor, M. (2022). Asymbiotic in vitro seed germination, in vitro seedling development, and ex vitro acclimatization of Spiranthes. Applications in Plant Sciences, 10(5), 1-8. https://doi.org/10.1002/aps3.11494
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